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...Kevin Rouault-Pierre
Chef d’équipe
Institut de recherche Saint-Louis
Pubmed : https://www.ncbi.nlm.nih.gov/myncbi/14M2DQoPpOx57/bibliography/public/
ORCID : https://orcid.org/0000-0001-7671-7364
Google Scholar : https://scholar.google.com/citations?user=HU9UcHYAAAAJ&hl=en&oi=ao
Linkedin : https://www.linkedin.com/in/kevin-rouault-pierre-2382489a/
X / BlueSky : @kevinrouault.bsky.social
Thématiques de recherche
Le programme de recherche du laboratoire vise à identifier et exploiter les vulnérabilités induites par la dérégulation de l’épissage afin de développer des stratégies thérapeutiques de précision pour les patients atteints de SMD.
Axes de recherche
Dans ce programme, nous visons à identifier et caractériser les événements d’épissage aberrant qui constituent des moteurs fonctionnels des syndromes myélodysplasiques (SMD), en particulier dans les cellules souches et progénitrices hématopoïétiques.
En nous appuyant sur des profils d’épissage générés à partir de cellules primaires de patients porteurs de mutations de SF3B1 ou SRSF2, nous avons identifié plusieurs centaines d’isoformes spécifiquement aberrantes, absentes des cellules hématopoïétiques normales.
A partir de ces signatures humaines, nous développons un criblage ciblé de gènes mal épissés dans les SMD afin d’identifier de nouveaux régulateurs clés de l’auto-renouvellement, de la différenciation et de la prolifération des cellules souches hématopoïétiques. Les candidats les plus pertinents sont ensuite validés fonctionnellement dans des modèles cellulaires humains, des xénogreffes dérivées de patients et des modèles murins conditionnels.
Cette approche intégrée permet de relier des altérations spécifiques de l’épissage à des vulnérabilités biologiques exploitables et d’ouvrir la voie à des stratégies thérapeutiques de précision fondées sur des mécanismes directement dérivés des cellules de patients.
Par exemple, en nous appuyant sur nos résultats concernant COASY, nous menons actuellement un essai clinique (B5ForMDS), dans lequel des patients atteints de SMD avec mutation de SF3B1 reçoivent de fortes doses de vitamine B5 afin de restaurer une érythropoïèse efficace. Link1 ; Link2.
L’épissage aberrant dans les SMD entraîne une production continue de transcrits et de protéines anormales, générant une charge protéotoxique chronique. Toutefois, les mécanismes par lesquels les cellules souches hématopoïétiques porteuses de mutations de l’épissage tolèrent et s’adaptent à ce stress restent encore mal compris.
Ce programme étudie comment les réseaux de protéostasie sont remodelés dans les cellules souches hématopoïétiques normales et mutées. En s’appuyant sur des travaux antérieurs concernant la sensibilité des cellules souches et progénitrices hématopoïétiques au stress du réticulum endoplasmique, il intègre des analyses d’épissage de l’ARN et des approches fonctionnelles dans des cellules humaines primaires.
Cette approche permet d’identifier des voies d’adaptation au stress spécifiquement requises par les clones mutés, tout en restant dispensables pour les cellules souches normales. Elle définit ainsi des vulnérabilités de protéostasie exploitables sur le plan thérapeutique et fournit un cadre mécanistique pour comprendre l’hétérogénéité inter-patients de l’évolution de la maladie et des réponses aux traitements.
Ce programme explore comment la charge élevée de transcrits sensibles à la dégradation médiée par les codons stop prématurés dans les SMD porteurs de mutations de l’épissage peut être exploitée pour induire des situations de létalité synthétique. Il s’appuie sur l’observation que la modulation de la traduction de ces transcrits aberrants accentue le stress protéotoxique et perturbe l’équilibre des systèmes de contrôle de la qualité des protéines dans les cellules mutées.
En combinant des approches fonctionnelles et des analyses génomiques intégrées dans des modèles myéloïdes mutés et non mutés, ce programme vise à identifier des dépendances moléculaires spécifiques qui émergent dans des contextes de stress protéique exacerbé. Ces travaux permettent de définir des vulnérabilités sélectives des clones porteurs d’altérations de l’épissage, tout en préservant les cellules normales.
A terme, cet axe fournit un cadre rationnel pour le développement de stratégies thérapeutiques combinatoires ciblant préférentiellement les cellules mutées et soutient l’émergence de nouvelles approches précliniques dans les SMD et d’autres pathologies associées à des mutations des facteurs de l’épissage.
Membres de l’équipe de Kevin Rouault-Pierre
Jimena CastorenaPost-doctorant (Equipe Paris)Marjorie DelahayePost-doctorant (Equipe Paris)Andrea MartisovaPost-doctorant (Equipe Paris)Arantxa Leon CarrascoPost-doctorant (Equipe Londres)Daniel Mouzo CalzadillaPost-doctorant (Equipe Londres)Shoshana BurkeClinicienne (Equipe Londres)Alumni
Celine PhilippePost-doctorantFadimana KayaDoctorantFaika Laz BantiDoctorantDoriana Di BellaPhDWei Wei TangPhDEvens BousiquotTechnicienPantelitsa ProtopapaTechnicienSophie Louise KatsiavriadesTechnicienBeatriz GalvaoTechnicienPramiksha BagaleTechnicienPublications scientifiques
Syed A. Mian & al, Science Translational Medicine, 2023
Vitamin B5 and succinyl-CoA improve ineffective erythropoiesis in SF3B1-mutated myelodysplasiaLire la publicationShoshana Burke & al, Hemasphere, 2025
Low-risk MDS-A spotlight on precision medicine for SF3B1-mutated patientsLire la publicationFadimana Kaya & al, Leukemia, 2025
DEK::NUP214 acts as an XPO1-dependent transcriptional activator of essential leukemia genesLire la publicationCéline Philippe & al, Leukemia, 2024
Pivotal role of the endoplasmic reticulum stress-related XBP1s/miR-22/SIRT1 axis in acute myeloid leukemia apoptosis and response to chemotherapyLire la publicationHannah Armes & al, British Journal of Haematology, 2022
Germline ERCC excision repair 6 like 2 (ERCC6L2) mutations lead to impaired erythropoiesis and reshaping of the bone marrow microenvironmentLire la publicationSuivez nos actions en vous inscrivant à la lettre d'information de l’institut
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